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121℃、30分钟灭菌常选D值2分钟BI的算法依据:D值与菌量如何对应12分钟致死量

121℃、30分钟灭菌,BI为什么常选D值2分钟?

AI 导读

D值约2分钟、菌量约10⁶的湿热BI在全部培养无生长时,按PDA TR61的对数线性模型可对应约12分钟生物致死量,这是121℃、30分钟灭菌验证常选该规格的算法依据。中国药典2025年版四部通则9207列出的商品湿热BI典型特征为121℃下D值1.5~3.0分钟、芽孢数1.0×10⁵~5.0×10⁶。D值1.5分钟的BI需以缩短暴露至75%等试验补足证明,D值2分钟并非法规统一要求。

正文

“

D值1.5分钟的BI能不能用?2分钟有没有特殊依据?3分钟是否更保险?选BI既要看原来有多少孢子、孢子有多耐热,也要看试验怎样判断结果,以及这些结果能证明多大的杀灭能力。

讨论湿热灭菌验证,常会遇到一个问题:同样是嗜热脂肪地芽孢杆菌,为什么有的方案接受D值1.5分钟,有的偏向2分钟,还有的直接采购更高耐热性的BI?

中国药典2025年版四部通则9207列出的商品化湿热BI典型特征,是121℃下D值1.5~3.0分钟、芽孢数1.0×10⁵~5.0×10⁶。这个范围帮助我们认识商品BI,并没有替每个灭菌程序完成选型。[1]

D值表示:在规定条件下,使活菌数减少90%所需的时间。每减少90%,就称为降低1个对数。例如100万个活孢子减少1个对数后,还剩10万个。


BI选型需要回答的是:已知一支BI的菌量和耐热性,用什么方法判断灭菌结果,才能证明程序达到了事先确定的杀灭目标。

本文看点

01

先把三个数分开:30分钟、12分钟、12D

02

D值2分钟的依据,来自“菌量与判定方法”的配合

03

D值1.5分钟能用,关键是补上对应的证明方法

01

CONCEPTS

先把三个数分开:30分钟、12分钟、12D

“121℃、30分钟”是程序描述。它是否对应冷点F₀约30分钟,要由负载实际温度曲线确认。

F₀采用121.1℃参考温度、z=10℃。若某位置恰好维持121.0℃达30分钟,仅这一保持段贡献的F₀约为29.3分钟;升温、降温阶段还可能贡献致死量。因此,完整周期F₀是否超过30分钟,要积分计算,不能从程序名称直接判断。

“F≥12分钟”则是某些过度杀灭设计采用的最低致死量。PDA TR61针对SIP过度杀灭应用,要求确认物理致死量Fphys和生物致死量Fbio均达到至少12分钟。这是该技术报告特定设计策略的判据,应结合灭菌对象和适用依据使用。[2]

“12D”表示降低12个对数。D值为1分钟时,12D相当于12分钟;D值为2分钟时,12D相当于24分钟。12分钟与12D只有在相应D值为1分钟时才数值对应。

由此可见,讨论D值2分钟的BI为什么合适,不能只用“30÷2=15D”回答。这个计算描述理论杀灭能力,还没有说明BI培养后全部无生长的试验结果能支持什么验证结论。

02

CHALLENGE

D值2分钟的依据,来自“菌量与判定方法”的配合

先明确试验怎样判断结果。常规BI挑战通常看灭菌后培养是否出现生长;做定量研究时,还会测定或估计剩余活孢子数。只看“长不长菌”和测出“还剩多少活孢子”,能提供的信息不同。

下面的计算采用对数线性模型,也就是假设每经过一个D值对应的时间,活孢子数再减少90%:

Fbio=Dₜ×SLR

SLR=lgN₀-lgNꜰ

N₀是灭菌前的芽孢数,Nꜰ是灭菌后的平均存活芽孢数,SLR表示减少了多少个对数。物理计算和BI参数要使用相同的参考温度及z值;基准不同时,需要先正确换算。

TR61的算例将菌量10⁶的BI完全灭活,按6个对数的降低量计算相应的生物致死量。其计算以灭菌后平均存活数Nꜰ=1作为边界:从10⁶降至1,正好减少6个对数。若D值为2.0分钟,便有:

Fbio=2.0×6=12.0分钟

这正是TR61“Microbial Challenge”实例1的计算。TR1也给出类似算例:D值2.1分钟,为证明Fbio≥12分钟,反算需要完全灭活的最低挑战菌量约为5.2×10⁵。[2][3]

CDE指导原则附件2采用相同关系:lgN₀=F₍T,z₎÷Dₜ+lgNₜ。为计算应接种多少芽孢,指南通常将灭菌后存活数取为Nₜ=1,即lgNₜ=0。这是接种量设计所采用的计算值,并不表示培养试验真的测出了1个活孢子。[4]

所以,D值约2分钟、菌量约10⁶,配合“BI全部培养无生长”的结果,可以按报告的方法支持Fbio至少12分钟的验证目标。这一选择有技术计算依据,但不能写成法规统一要求所有121℃程序必须使用D=2.0的BI。

需要区分“按报告方法进行验证判断”和“精确测出实际杀灭量”。有限数量BI全部培养无生长,只表示在试验条件下未检出存活,不能据此精确测得实际Fbio=12分钟。实际致死量可能更高,也不能仅凭这一结果直接测出产品SAL,也就是无菌保证水平。

03

METHOD

D值1.5分钟能用,关键是补上对应的证明方法

仍以每支BI含10⁶个芽孢、灭菌后培养全部无生长为例,按上述方法计算:

D值

按报告方法计算的生物致死量

对12分钟目标的解释

1.5分钟

1.5×6=9分钟

仅凭完整周期培养全部无生长,按此方法只能对应9分钟

2.0分钟

2.0×6=12分钟

与12分钟目标配合

2.5分钟

2.5×6=15分钟

生物挑战比12分钟目标更强

3.0分钟

3.0×6=18分钟

需要能覆盖更强挑战的实际过程

这张表比较的是:同样观察到BI全部无生长,不同D值能按报告方法支持多大的生物致死量。它没有给BI划分合规等级,也不表示D=1.5的BI不能用于过度杀灭程序。

TR61实例2讨论了D=1.5分钟、菌量10⁶的情况:把最低可接受生产周期的暴露时间缩短至75%,完成BI完全灭活,再按报告方法推算完整周期的生物致死量。部分周期按9分钟计算,换算到完整周期后为12分钟。[2]

暴露时间因子=(1.5×6)÷12=0.75

完整周期Fbio=9÷0.75=12分钟

采用这一方法,要先证明缩短暴露的试验能够代表完整周期的杀灭过程。不能只把程序面板上的30分钟改成22.5分钟,就直接按比例推算;还要研究负载温度、排气、蒸汽穿透,以及升降温阶段对致死量的贡献。

也可以调整初始菌量,或采用适当的定量研究。若计算时取Nꜰ=1,D=1.5分钟要对应12分钟,就需要N₀=10⁸。这个菌量超出了药典表中所列商品湿热BI的典型范围,通常不能直接从常规商品BI中选到。[1][4]


D=1.5可以使用,但方案必须说明如何证明它达到了事先确定的验证目标。只把它放进30分钟完整循环,观察到全部无生长,再根据物理F₀计算出理论杀灭量,并没有增加独立的生物学测量证据。

04

RESISTANCE

D值3分钟更耐热,也要解释它适合挑战什么

D=3.0分钟、菌量10⁶,灭菌后培养全部无生长,按报告方法对应18分钟的生物致死量。若某工艺仅以12分钟为最低设计要求,这支BI提出了更高的杀灭要求;方案中应说明选择理由,并确认实际程序有能力完成这一挑战。

但不能据此写成“D=3.0在121℃、30分钟的程序里很容易长菌”,也不能把它的阳性直接叫作“假失败”。

假设BI位置确实获得30分钟等效致死量,且计算基准和湿热条件适用,模型预测的降低量是30÷3=10个对数。对初始10⁶芽孢,对应的每支平均存活数为10⁻⁴。它与“只获得12~18分钟致死量”的情形有明显差别。

药典表中13.5~32.0分钟的杀灭时间范围,也不能直接作为某批D=3.0的BI在实际灭菌柜内必需暴露32分钟的结论。批次性能、测试条件和实际负载暴露需要分别核实。[1]

一旦正式验证使用的BI出现有效阳性,应调查其身份、菌量与耐热性、培养条件、放置位置,以及实际排气和蒸汽穿透情况;若物理参数也偏离已验证范围,更应评估过程和负载影响。Annex 1要求调查失败或偏离已验证条件的灭菌过程。[5]

选较高D值可以形成更强挑战,却不能代替对过程的理解;出现阳性后换成较低D值再试到通过,同样不能解决原来的问题。

05

CORRELATION

物理与生物“等效”,怎样做得更扎实

常规验证中,物理确认与BI挑战要同时支持预设接受标准。CDE指导原则明确提出,两类结果应一致且不能相互替代。[4]

如果还要定量研究两者是否吻合,TR1 §4.4.1.6提出:当BI的Fbio可测量时,同位置测得的Fphys与Fbio应相等。这里包含实际测量和模型的不确定性,需要用合理的试验设计评价一致性,不能只要求两个报表数值机械相同。[3]

可以在开发阶段设计缩短暴露的试验,将BI布置在具有代表性的困难位置,并在邻近位置测温;必要时采用平行对照件,避免探头改变蒸汽穿透。通过适用的计数或生长/不生长数据分析获得SLR,再计算Fbio,与根据温度曲线计算的F值比较。

生长/不生长数据的统计分析有重复性前提。TR1 §3.1.1.2明确指出,散布在生产灭菌器不同位置的BI,不能默认视为接受相同致死量的重复样本,也不能简单汇总阳性比例来测定D值或评估杀灭;D值定值研究通常使用抗力仪保证暴露一致性。[3]

TR1有两个重要限定。第一,为协调物理与生物F值,应使用BI系统的实际z值计算相应的物理F值,不能不加说明地把所有物理积分都固定成z=10℃。第二,常规强灭菌循环使BI全部阴性后,通常无法精确测得其实际Fbio;TR1也承认,这种一致性研究尚无统一标准方法,许多成功周期未单独开展此项研究。[3]

报告举例:D=2.5分钟、N₀=3×10⁶,将平均存活数降至10⁻²,对应F约21.2分钟。若根据温度曲线计算的F值接近21.2分钟,而充分设计的试验中BI阳性比例明显偏高,应研究蒸汽传递、位置或模型参数是否存在问题。10⁻²~10⁻³是报告提出的灵敏度与预期阴性概率之间的平衡区间,不等于少量BI全部阴性就能准确估计这个存活水平。[3]

这类研究有助于解释:测得的温度曲线,是否真实代表BI所经历的湿热杀灭条件。Annex 1本身没有规定Fphys必须在数值上等于Fbio,而是要求以物理测量及适当的BI支持验证,且不能用孤立的BI结果推翻其他关键参数和过程设计。[5]

06

SELECTION

现场选型,最终要落在这几项依据上

先明确程序至少需要提供多大的致死量、灭菌什么物品、采用什么验证方法,再选择BI的菌种、菌量、D值和使用形式,并说明怎样根据试验结果判断是否达到目标。

CDE注射剂指导原则对过度杀灭法提出,通常采用嗜热脂肪地芽孢杆菌芽孢,或其他D₁₂₁℃大于1分钟的芽孢。它没有规定必须使用D=2.0的BI;这一菌种与耐热性条件,还需要与后续挑战设计共同评价。[4]

如果采用TR61算例的方法,以BI完全灭活支持Fbio≥12分钟的验证目标,D约2分钟、菌量约10⁶是方便的选择。D在2.0~2.5分钟之间也可能适用,但需要满足前述假设,不能推广为所有121℃、30分钟程序的统一采购标准。

确认时应使用该批BI的菌量和D值一起计算。例如N₀=1.5×10⁶,lgN₀约6.18,D=2.0分钟,按上述“全部无生长”的判定方法计算,约对应12.35分钟。选型时还应考虑批次参数的变化并留出余量,不能只用标称值凑出恰好12分钟。

还要确认BI的实际使用方式适合负载。BI耐热性会受介质、载体和包装影响;供应商在标准条件下测得的数据,是否适用于现场的使用形式,需要论证。芽孢悬液用于液体物品灭菌时,药典要求测定其在被灭菌液体中的芽孢数和D值。[1]

供应商合格、运输储存受控、培养与回收条件适用,也是选型的一部分。Annex 1 §8.43要求新批BI使用前核实菌量、纯度和菌种身份;D值、z值等关键参数通常可使用合格供应商的批次证书,并非要求每批都在生产灭菌柜内重新测定抗力。[5]

评价一支BI,要看它是否适合实际工艺、负载和验证方法。D值2分钟之所以常见,是因为在某些验证方法下,菌量10⁶的BI全部培养无生长,可以支持12分钟生物致死量的判断。D值1.5或3.0也有适用场景,方案需要写清选择理由、怎样开展试验,以及试验结果能支持什么结论。

07

REFERENCES

参考依据

[1]《中国药典》2025年版四部,通则9207《灭菌用生物指示剂指导原则》:商品BI典型特征、应用要求,以及芽孢悬液用于液体物品灭菌的要求。

[2]PDA Technical Report No. 61(2013),Steam In Place:过度杀灭设计及Microbial Challenge实例1~3。本文引用其SIP确认方法讨论选型逻辑;用于灭菌柜时,应另行论证负载、蒸汽传递和验证方法的适用性。

[3]PDA Technical Report No. 1,Revised 2007:§3.1.2,§4.4.1.6,§5.2工艺确认算例及§5.2.2。PDA技术报告为行业技术参考,不等同于法规条文。

[4]《化学药品注射剂灭菌和无菌工艺研究及验证指导原则(试行)》:湿热灭菌物理确认、生物学确认及附件2。适用对象为化学药品注射剂,不宜将其全部条件无差别推广至所有物品灭菌。

[5]EU GMP Annex 1(2022),§§8.36、8.41~8.43、8.51~8.52、8.59。欧盟委员会原文。


END

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你们的BI选型方案,是否写清了每支BI原来有多少孢子、灭菌后用什么结果判定合格,以及怎样据此判断程序的杀灭能力?欢迎留言交流。

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